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麻醉小鼠后，用溫水（但水溫不要過高）擦拭尾巴，引起輕微的血管擴(kuò)張。

用無菌手術(shù)刀、刀片或鋒利的剪刀，快速截?cái)嘈∈笪布?.5-1cm。如果需要多次采血，之后每次僅需截除2-3mm。

可以從尾部向尾尖方向按摩，以增加血流（但是，這會(huì)降低血樣的質(zhì)量，增加溶血的風(fēng)險(xiǎn)）。也可以用毛細(xì)采血管收集血液，或直接滴入收集管中。采血結(jié)束后，按壓傷口或使用止血?jiǎng)ㄈ缦跛徙y，6%液體火棉膠）來止血。每次采血量大約可達(dá)0.1ml。

優(yōu)點(diǎn)：眼眶后靜脈叢采血法方法簡單，便于掌握。血流較快，采血量多，能在較短時(shí)間內(nèi)采約0.5mL血。傷口較小，愈合較快。成功率高，死亡率低。

缺點(diǎn)：不能避免組織液的混入，對于血樣要求較高的研究應(yīng)謹(jǐn)慎使用。

小鼠經(jīng)氣體麻醉后，左手拇指及食指壓迫小鼠的頸部兩側(cè)，阻礙靜脈回流，使眼球充分外突，提示眼眶后靜脈叢充血。也可以將小鼠放置在側(cè)臥位，拇指與食指分別置于小鼠頭頂和下頜，將皮膚向后及向下拉。抓握時(shí)要避免對氣管施壓，否則可能會(huì)影響小鼠呼吸。

將毛細(xì)采血管（建議采用0.5*100mm規(guī)格的毛細(xì)管，在使用前折成小段，每段大約3-4cm）置于內(nèi)側(cè)眼角處，并且以與鼻翼平面成30-45度沿內(nèi)眥插入內(nèi)眼角，滑入眼球后方，輕輕向眼底方向刺入。

當(dāng)感到有阻力時(shí)即輕輕旋轉(zhuǎn)采血管的同時(shí)施加壓力以切開靜脈叢，血液將通過毛細(xì)作用流入采血管。不能刺地過深，一般2-3mm即可。

采血結(jié)束后，立即松開手指對小鼠的壓迫，使眼球復(fù)位，同時(shí)將采血器拔出?？捎酶擅耷驂鹤⊙劭?，確保止血。一般眼眶靜脈叢采血量可以達(dá)到0.2-0.3ml。

綁定小鼠，可將小鼠側(cè)臥，使小鼠頭部盡量固定。在小鼠嘴角沿線與外眼角線橡膠處找到頜下靜脈的大致位置，會(huì)發(fā)現(xiàn)一個(gè)無毛的小點(diǎn)，有點(diǎn)像酒窩，基本位于嘴角遠(yuǎn)端稍低于下巴線。

針保持垂直于皮膚表面，刺入皮膚。深度不超過針頭的斜面（約3mm）。拔出針頭后，血液就會(huì)流出。為方便采血，可使小鼠頭部低于心臟高度。采血結(jié)束后，按壓以止血。一般采血量為0.2-0.5ml。

將小鼠置于固定管或架中，但保持后腿可自由活動(dòng)，剃除跗部的毛。為使膝蓋與踝關(guān)節(jié)之間的隱靜脈更加明顯，可以在后腿膝蓋以上使用止血帶。在近尾側(cè)的皮膚表面可以找到隱靜脈。

針垂直于皮膚表面扎破血管。不要進(jìn)針過深，以免刺穿肌肉或碰到骨頭。血液會(huì)從入針處慢慢流出，用毛細(xì)采血管收集，并松開止血帶。采血結(jié)束后，按壓傷口或使用止血?jiǎng)ㄈ缦跛徙y）以止血，并將小鼠放回籠內(nèi)。

將小鼠麻醉后仰臥于實(shí)驗(yàn)臺(tái)面上并固定。用眼科彎鑷將小鼠舌頭拉出，可明顯看到小鼠舌下靜脈。

持采血針與舌面呈10°夾角插入舌下靜脈，見有回血緩慢抽取，直至采到所需血量。

該方法采血量( 0.2 ml至近全血量) 及采血次數(shù)( 1～8次/d) 可隨分析目的而變動(dòng),適用于人手少、動(dòng)物數(shù)量多、實(shí)驗(yàn)時(shí)間緊以及藥代動(dòng)力學(xué)等需連續(xù)少量取血的研究中。但要求技術(shù)熟練, 方能得心應(yīng)手。在一定時(shí)間內(nèi), 如果采血量和采血次數(shù)增加, 會(huì)使動(dòng)物引起一定的應(yīng)激性反應(yīng)或采血部位的傷害。

將動(dòng)物胸前區(qū)采血部位皮膚消毒, 于胸前正中線約第四肋骨水平先用注射器針頭沿水平方向刺入皮膚。

再向頸靜脈所在位置沿皮下進(jìn)針, 針頭到達(dá)頸靜脈所在位置時(shí), 輕引注射器內(nèi)筒使之呈負(fù)壓, 再使注射器與胸部表面成30°～ 40°角向頸靜脈刺入, 此時(shí)注射器應(yīng)與頸靜脈走行方向相一致。

在刺入過程中, 速度要緩慢, 刺入的深度約5 mm, 在試探性緩慢刺入或拔出時(shí), 如有血液自動(dòng)流入注射器內(nèi)筒, 說明針尖已在頸靜脈內(nèi), 此時(shí)固定好動(dòng)物, 勿使注射器針頭移動(dòng)。

也可將采血針抵在動(dòng)物胸骨上以便于操作, 小心抽引注射器內(nèi)筒, 待血液足夠時(shí), 拔出采血針, 用干棉球按壓止血。

一個(gè)人可以用微型手電筒或LED小夜燈等緊貼尾靜脈，在燈光的照射下，尾靜脈會(huì)被很清晰的顯示，提高成功率。

固定器（自行設(shè)計(jì)）小鼠，將尾巴拉直，用酒精棉球擦拭尾巴或者用熱水或者熱毛巾焐熱尾巴（熱水浸泡鼠尾）, 使尾部靜脈擴(kuò)張。

用左邊手的食指，中指，無名指及大拇指將小鼠尾巴固定。

握住1ml 注射器（選用29G的針頭為宜）前面0.1ml處，右手小指搭在拽著鼠尾的左手拇指處斜15°角緩慢進(jìn)針（鼠尾遠(yuǎn)端約1/3的位置）。適當(dāng)增加內(nèi)壓看有無回血，若有回血?jiǎng)t緩慢抽取所需血量，棉簽按壓止血。

將小鼠麻醉后，平躺放置在實(shí)驗(yàn)臺(tái)面上，中指、食指固定小鼠尾部。

用刀片輕劃小鼠尾側(cè)靜脈或尾正中動(dòng)脈。待血液流出后，用移液槍吸取血液。取血完畢后，棉簽按壓止血。

優(yōu)點(diǎn)：采血法取血量大、不易溶血，血液質(zhì)量較好，適用于多項(xiàng)目檢測，且不損傷器官，有利于病理組織學(xué)檢查。

缺點(diǎn)：操作比較復(fù)雜，應(yīng)注意掌握適當(dāng)?shù)穆樽砩疃?，防止心跳驟停，同時(shí)防止大鼠躁動(dòng)。本方法造成的出血速度快，易造成出血性的心臟停跳，故要防止采血過程中出血。且本方法采血過程中如多次采血不宜拔出針頭。

將大鼠腹腔注射麻醉劑后，直到身體全身變軟，把大鼠仰臥固定在手術(shù)臺(tái)上，背部可以放置—粗試管以充分暴露腹主動(dòng)脈。

常規(guī)消毒后用手術(shù)剪刀沿腹正中線剪開腹腔，用小鑷子輕輕扒開血管周圍脂肪，再用棉球把覆蓋在血管的多余脂肪擦干凈，直到清晰看清血管為止（用棉球可以盡量減少小血管破裂出血，影響接下來進(jìn)針時(shí)的視線）。

找腹主動(dòng)脈（粉）在脊柱上面，腹腔靜脈血管（比腹主動(dòng)脈粗，黑）旁，找到后，術(shù)者先固定血管，盡可避免血管移位，左手拇指和食指固定住血管兩旁的脂肪及其它臟器，無名指按住血管進(jìn)針點(diǎn)的上端，降低血壓，可以避免血液濺出。

右手持穿刺針，針尖斜面朝下，入針角度約（小于）30度左右，朝向心端方向刺入，深度以5m左右為宜，進(jìn)針后可以用止血夾夾住針頭，可以避免麻醉不夠掙扎導(dǎo)致血管被針頭戳破。

取完血后，用棉球輕壓針眼處，快速拔出針頭，可以反復(fù)采集多管的血樣進(jìn)行不同項(xiàng)目的測試（一般體重200~300g大鼠可采血液8~10mL）。

優(yōu)點(diǎn)：取血快，血液不易凝集，心區(qū)面積大,進(jìn)針準(zhǔn)確性較高,可一針見血,且采血量能滿足大量試驗(yàn)需要。

缺點(diǎn)：采血成功率較小，死亡率高，心臟損傷較大，難以迅速愈合，不利于短期連續(xù)采血，亦無法確定是靜脈血還是動(dòng)脈血。

一般有3種心臟采血的姿勢：1、托起小鼠軀干使身體垂直與地面。身體直立以防止心臟的偏轉(zhuǎn)或胸部的扭曲。使用1毫升注射器和22g針頭。將針頭從胸部中央向下5mm處插入，深度5-10mm，將注射器與胸部保持25-30度；2、使小鼠仰臥固定，剪去胸前區(qū)被毛，皮膚消毒后，用左手食指在左側(cè)第3～4肋間觸摸到心搏處，右手持帶有4~5號針頭的注射器，選擇心搏最強(qiáng)處穿刺；3、使小鼠側(cè)臥，垂直于胸壁插入針頭。

如果血液沒有立刻進(jìn)入注射器，可以輕輕抽空針管，產(chǎn)生一個(gè)真空區(qū)。

當(dāng)注射器中出現(xiàn)血液時(shí)，將針管保持靜止并輕輕地抽拉活塞芯桿，以獲得更多的血液。一般可以采到0.8-1.0ml血液。

用左手拇指、食指和中指抓取小鼠的頸部頭皮，小指和無名指固定尾巴，輕壓需要摘取的眼部皮膚，使眼球充血突出。

用眼科剪剪去小鼠的胡須，防止血從胡須處順流而下引起溶血。

用眼科彎鑷夾取眼球并快速摘取，并使血液從眼眶內(nèi)流入0.5mlEP管中。待小鼠取血完畢后，斷頸處死。

用左手拇指和食指以背部較緊的捏住小鼠頸部皮膚，并作小鼠頭部朝下的姿勢。

右手用剪刀猛剪鼠頸，約1/2-4/5的頸部剪斷，讓血滴入容器中。